本期細(xì)胞學(xué)堂為大家整理了大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞分離提取的方法、注意事項(xiàng)及鑒定指標(biāo),幫助您快速上手開展實(shí)驗(yàn)。
分離提取步驟
骨髓取材
將大鼠斷頸處死后, 置于75%醫(yī)用酒精內(nèi)浸泡5~10 min,消毒后將動(dòng)物轉(zhuǎn)運(yùn)至超凈工作臺(tái)內(nèi)。無菌分離雙側(cè)股骨和脛骨,用新的剪刀鑷子清除股骨脛骨周圍肌肉組織;保持骨頭完整,留取純凈骨頭,將組織轉(zhuǎn)移至新的含有PBS的培養(yǎng)皿內(nèi),剪去骨干的兩端, 暴露骨髓腔;取注射器,吸取培養(yǎng)基,從骨頭一端插針,沖洗骨髓(至骨頭發(fā)白透亮),反復(fù)吹打制成單細(xì)胞懸液。
分離方法
BMSCs常見的分離方法有密度梯度離心法、貼壁法以及免疫磁珠分選法,大家可以根據(jù)自己實(shí)驗(yàn)室條件來選擇合適的分離方法。
1
密度梯度離心法
將裝有大鼠骨髓液的15 mL離心管,1500 rpm離心5 min;棄上清,用完-全培養(yǎng)基重懸沉淀;將培養(yǎng)基重懸的細(xì)胞懸液緩慢滴加到Percoll分離液(用PBS稀釋)上方,形成密度梯度分離液;2000~2500 rpm離心25 min,吸取中間層的白色霧狀細(xì)胞層,加入PBS清洗細(xì)胞,1800 rpm離心5 min;棄上清,保留細(xì)胞沉淀;用細(xì)胞完-全培養(yǎng)基重懸沉淀,將細(xì)胞懸液按1×106/mL密度接種于T25瓶中,于37℃,5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng)。首-次2 d換液,棄去未貼壁細(xì)胞, 此后每2~3 d換液一次;待細(xì)胞融合達(dá)80%后, 用胰酶消化1~2 min后傳代培養(yǎng)。
2
貼壁法
也稱全骨髓培養(yǎng)法或一步法。將收集的骨髓懸液經(jīng)200目篩網(wǎng)過濾后,用完-全培養(yǎng)基制成單細(xì)胞懸液;培養(yǎng)48 h首-次換液,棄去未貼壁細(xì)胞;此后每2~3 d換液一次,觀察細(xì)胞的生長及融合程度,待細(xì)胞融合80%以上后開始傳代培養(yǎng)。
3
流式細(xì)胞儀或免疫磁珠分選法
免疫磁珠法和流式細(xì)胞儀分選法通過識(shí)別細(xì)胞表面特異性抗原分離細(xì)胞,可獲得純度較高的細(xì)胞,但對細(xì)胞的活性影響較大,獲得的細(xì)胞量少,需要特殊的儀器,實(shí)際應(yīng)用受限。
注意事項(xiàng)
鑒定指標(biāo)
01
細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察
剛分離提純的原代細(xì)胞形態(tài)呈圓形,大小不一,漂浮于培養(yǎng)液中(圖1)。經(jīng)純化貼壁后可見,細(xì)胞呈成纖維樣緊密排列,漩渦樣生長,胞核大、清晰、呈長梭形,細(xì)胞形態(tài)趨于統(tǒng)一(圖2),其形態(tài)符合BMSCs 的貼壁形態(tài)。
圖1 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞剛分離,呈圓形
圖2 普諾賽實(shí)驗(yàn)室提純的大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞
02
表面標(biāo)志物
目前使用較多的是CD90、CD29、CD44等陽性表達(dá)指標(biāo)。
普諾賽實(shí)驗(yàn)室提取的大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞CD90表達(dá)